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Aggregation-Induced Emission (AIE) in Super-resolution Imaging: Cationic AIE Luminogens (AIEgens) for Tunable Organelle-Specific Imaging and Dynamic Tracking in Nanometer Scale

聚集诱导发射 纳米 分辨率(逻辑) 材料科学 跟踪(教育) 生物成像 阳离子聚合 纳米技术 荧光 光学 物理 计算机科学 人工智能 高分子化学 复合材料 心理学 教育学
作者
Yanzi Xu,Dongfeng Dang,Ning Zhang,Jianyu Zhang,Ruohan Xu,Zhi Wang,Yu Zhou,Haoke Zhang,Haixiang Liu,Zhiwei Yang,Lingjie Meng,Jacky W. Y. Lam,Ben Zhong Tang
出处
期刊:ACS Nano [American Chemical Society]
卷期号:16 (4): 5932-5942 被引量:34
标识
DOI:10.1021/acsnano.1c11125
摘要

Organelle-specific imaging and dynamic tracking in ultrahigh resolution is essential for understanding their functions in biological research, but this remains a challenge. Therefore, a facile strategy by utilizing anion−π+ interactions is proposed here to construct an aggregation-induced emission luminogen (AIEgen) of DTPAP-P, not only restricting the intramolecular motions but also blocking their strong π–π interactions. DTPAP-P exhibits a high photoluminescence quantum yield (PLQY) of 35.04% in solids, favorable photostability and biocompatibility, indicating its potential application in super-resolution imaging (SRI) via stimulated emission depletion (STED) nanoscopy. It is also observed that this cationic DTPAP-P can specifically target to mitochondria or nucleus dependent on the cell status, resulting in tunable organelle-specific imaging in nanometer scale. In live cells, mitochondria-specific imaging and their dynamic monitoring (fission and fusion) can be obtained in ultrahigh resolution with a full-width-at-half-maximum (fwhm) value of only 165 nm by STED nanoscopy. This is about one-sixth of the fwhm value in confocal microscopy (1028 nm). However, a migration process occurs for fixed cells from mitochondria to nucleus under light activation (405 nm), leading to nucleus-targeted super-resolution imaging (fwhm= 184 nm). These findings indicate that tunable organelle-specific imaging and dynamic tracking by a single AIEgen at a superior resolution can be achieved in our case here via STED nanoscopy, thus providing an efficient method to further understand organelle's functions and roles in biological research.
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