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Determination of Vaccine Immunogenicity Using Bovine Monocyte-Derived Dendritic Cells

生物 CD14型 免疫系统 抗原 免疫学 树突状细胞 CD40 CD86 免疫原性 外周血单个核细胞 启动(农业) CD8型 抗原提呈细胞 白细胞介素2受体 单核细胞 T细胞 细胞毒性T细胞 体外 发芽 植物 生物化学
作者
Fatima Liaqat,Richard T. Kangethe,Rudolf Pichler,Bo Liu,Johann Huber,Viskam Wijewardana,Giovanni Cattoli,Luca Porfiri
出处
期刊:Journal of Visualized Experiments [MyJoVE Corporation]
卷期号: (195)
标识
DOI:10.3791/64874
摘要

Dendritic cells (DCs) are the most potent antigen-presenting cells (APCs) within the immune system. They patrol the organism looking for pathogens and play a unique role within the immune system by linking the innate and adaptive immune responses. These cells can phagocytize and then present captured antigens to effector immune cells, triggering a diverse range of immune responses. This paper demonstrates a standardized method for the in vitro generation of bovine monocyte-derived dendritic cells (MoDCs) isolated from cattle peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) and their application in evaluating vaccine immunogenicity. Magnetic-based cell sorting was used to isolate CD14+ monocytes from PBMCs, and the supplementation of complete culture medium with interleukin (IL)-4 and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) was used to induce the differentiation of CD14+ monocytes into naive MoDCs. The generation of immature MoDCs was confirmed by detecting the expression of major histocompatibility complex II (MHC II), CD86, and CD40 cell surface markers. A commercially available rabies vaccine was used to pulse the immature MoDCs, which were subsequently co-cultured with naive lymphocytes. The flow cytometry analysis of the antigen-pulsed MoDCs and lymphocyte co-culture revealed the stimulation of T lymphocyte proliferation through the expression of Ki-67, CD25, CD4, and CD8 markers. The analysis of the mRNA expression of IFN-γ and Ki-67, using quantitative PCR, showed that the MoDCs could induce the antigen-specific priming of lymphocytes in this in vitro co-culture system. Furthermore, IFN-γ secretion assessed using ELISA showed a significantly higher titer (**p < 0.01) in the rabies vaccine-pulsed MoDC-lymphocyte co-culture than in the non-antigen-pulsed MoDC-lymphocyte co-culture. These results show the validity of this in vitro MoDC assay to measure vaccine immunogenicity, meaning this assay can be used to identify potential vaccine candidates for cattle before proceeding with in vivo trials, as well as in vaccine immunogenicity assessments of commercial vaccines.
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