NSD2 drives t(4;14) myeloma cell dependence on adenylate kinase 2 by diverting one-carbon metabolism to the epigenome

腺苷酸激酶 生物 分子生物学 组蛋白 肌酸激酶 细胞生物学 生物化学 DNA
作者
Amin Sobh,Elena Encinas,Alisha Patel,Greeshma Surapaneni,Emilie Bonilla,Charlotte L Kaestner,Janai Poullard,Monica Clerio,Karthik Vasan,Tzipporah Freeman,Dongwen Lv,Daphne Dupéré-Richér,Alberto Riva,Benjamin G. Barwick,Daohong Zhou,Lawrence Boise,Constantine S. Mitsiades,Baek Kim,Richard L. Bennett,Navdeep S. Chandel
出处
期刊:Blood [American Society of Hematology]
卷期号:144 (3): 283-295 被引量:5
标识
DOI:10.1182/blood.2023022859
摘要

Abstract Chromosomal translocation (4;14), an adverse prognostic factor in multiple myeloma (MM), drives overexpression of the histone methyltransferase nuclear receptor binding SET domain protein 2 (NSD2). A genome-wide CRISPR screen in MM cells identified adenylate kinase 2 (AK2), an enzyme critical for high-energy phosphate transfer from the mitochondria, as an NSD2-driven vulnerability. AK2 suppression in t(4;14) MM cells decreased nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADP[H]) critical for conversion of ribonucleotides to deoxyribonucleosides, leading to replication stress, DNA damage, and apoptosis. Driving a large genome-wide increase in chromatin methylation, NSD2 overexpression depletes S-adenosylmethionine, compromising the synthesis of creatine from its precursor, guanidinoacetate. Creatine supplementation restored NADP(H) levels, reduced DNA damage, and rescued AK2-deficient t(4;14) MM cells. As the creatine phosphate shuttle constitutes an alternative means for mitochondrial high-energy phosphate transport, these results indicate that NSD2-driven creatine depletion underlies the hypersensitivity of t(4;14) MM cells to AK2 loss. Furthermore, AK2 depletion in t(4;14) cells impaired protein folding in the endoplasmic reticulum, consistent with impaired use of mitochondrial adenosine triphosphate (ATP). Accordingly, AK2 suppression increased the sensitivity of MM cells to proteasome inhibition. These findings delineate a novel mechanism in which aberrant transfer of carbon to the epigenome creates a metabolic vulnerability, with direct therapeutic implications for t(4;14) MM.
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