Application of N-Terminal Site-Specific Biotin and Digoxigenin Conjugates to Clinical Anti-drug Antibody Assay Development

化学 生物素 赖氨酸 结合 地高辛 亲和素 免疫原性 抗体 生物化学 组合化学 氨基酸 分子生物学 生物 基因表达 数学分析 基因 免疫学 原位杂交 数学
作者
Xiangdan Wang,W. L. William Chang,Mehraban Khosraviani,Wilson Phung,Lingling Peng,Sivan Cohen,Benjamin T. Andrews,Yonglian Sun,Christopher W. Davies,James T. Koerber,Jihong Yang,Aimin Song
出处
期刊:Bioconjugate Chemistry [American Chemical Society]
卷期号:35 (2): 174-186 被引量:1
标识
DOI:10.1021/acs.bioconjchem.3c00421
摘要

Biotin- and digoxigenin (DIG)-conjugated therapeutic drugs are critical reagents used for the development of anti-drug antibody (ADA) assays for the assessment of immunogenicity. The current practice of generating biotin and DIG conjugates is to label a therapeutic antibody with biotin or DIG via primary amine groups on lysine or N-terminal residues. This approach modifies lysine residues nonselectively, which can impact the ability of an ADA assay to detect those ADAs that recognize epitopes located at or near the modified lysine residue(s). The impact of the lysine modification is considered greater for therapeutic antibodies that have a limited number of lysine residues, such as the variable heavy domain of heavy chain (VHH) antibodies. In this paper, for the first time, we report the application of site-specifically conjugated biotin- and DIG-VHH reagents to clinical ADA assay development using a model molecule, VHHA. The site-specific conjugation of biotin or DIG to VHHA was achieved by using an optimized reductive alkylation approach, which enabled the majority of VHHA molecules labeled with biotin or DIG at the desirable N-terminus, thereby minimizing modification of the protein after labeling and reducing the possibility of missing detection of ADAs. Head-to-head comparison of biophysical characterization data revealed that the site-specific biotin and DIG conjugates demonstrated overall superior quality to biotin- and DIG-VHHA prepared using the conventional amine coupling method, and the performance of the ADA assay developed using site-specific biotin and DIG conjugates met all acceptance criteria. The approach described here can be applied to the production of other therapeutic-protein- or antibody-based critical reagents that are used to support ligand binding assays.
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