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Metabolism of [U‐13C]glucose in human brain tumors in vivo

柠檬酸循环 谷氨酰胺 新陈代谢 体内 碳水化合物代谢 生物化学 三羧酸 生物 糖酵解 代谢物 葡萄糖摄取 氧化磷酸化 厌氧糖酵解 化学 氨基酸 内分泌学 胰岛素 生物技术
作者
Elizabeth A. Maher,Isaac Marin‐Valencia,Robert Bachoo,Tomoyuki Mashimo,Jack Raisanen,Kimmo J. Hatanpaa,Ashish Jindal,F. Mark H. Jeffrey,Changho Choi,Christopher J. Madden,Dana Mathews,Juan M. Pascual,Bruce Mickey,Craig R. Malloy,Ralph J. DeBerardinis
出处
期刊:NMR in Biomedicine [Wiley]
卷期号:25 (11): 1234-1244 被引量:306
标识
DOI:10.1002/nbm.2794
摘要

Glioblastomas and brain metastases demonstrate avid uptake of 2‐[ 18 F]fluoro‐2‐deoxyglucose by positron emission tomography and display perturbations of intracellular metabolite pools by 1 H MRS. These observations suggest that metabolic reprogramming contributes to brain tumor growth in vivo . The Warburg effect, excess metabolism of glucose to lactate in the presence of oxygen, is a hallmark of cancer cells in culture. 2‐[ 18 F]Fluoro‐2‐deoxyglucose‐positive tumors are assumed to metabolize glucose in a similar manner, with high rates of lactate formation relative to mitochondrial glucose oxidation, but few studies have specifically examined the metabolic fates of glucose in vivo . In particular, the capacity of human brain cancers to oxidize glucose in the tricarboxylic acid cycle is unknown. Here, we studied the metabolism of human brain tumors in situ . [U‐ 13 C]Glucose (uniformly labeled glucose, i.e. d ‐glucose labeled with 13 C in all six carbons) was infused during surgical resection, and tumor samples were subsequently subjected to 13 C NMR spectroscopy. The analysis of tumor metabolites revealed lactate production, as expected. We also determined that pyruvate dehydrogenase, turnover of the tricarboxylic acid cycle, anaplerosis and de novo glutamine and glycine synthesis contributed significantly to the ultimate disposition of glucose carbon. Surprisingly, less than 50% of the acetyl‐coenzyme A pool was derived from blood‐borne glucose, suggesting that additional substrates contribute to tumor bioenergetics. This study illustrates a convenient approach that capitalizes on the high information content of 13 C NMR spectroscopy and enables the analysis of intermediary metabolism in diverse cancers growing in their native microenvironment. Copyright © 2012 John Wiley & Sons, Ltd.
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